Dept. of Meat Hygiene,

Fac. Vet. Med., Alex. Unv.

 

Microbial aspects of lamb meat treated with lactic and acetic acids

(With 8 Tables)

 

By

M.M. Ebraheam Mousa and A.A. Bkheet*

*Animal Health Res. Inst. Damanhour Bransh

(Received at 20/4/2009)

 

الوجهة الميکروبية للحوم الضأن المعاملة بحمضى اللاکتيک والخليک

 

محمد محمد إبراهيم موسى ، احمد أبو المجد بخيت

 

أجريت هذه الدراسة لتقييم قدرة الأحماض العضوية على تحسين جودة لحوم الضان الطازجة نوعيا عند 24 و 48 و 72 ساعة و 7 و 14 يوم بتطبيق عملية التبريد بعد معالجتها بالأحماض العضوية (حمض اللاکتيک 1% و2% حمض الخليک 1% و2%) نتج عن هذه المعالجة لعدد 25 عينة قيد الدراسة والتي أخذت منها بعض الأجزاء ککاشف تأثيرات معنوية ضد البکتريا کان لها الأثر الأکبر في أطاله عمر وصلاحية اللحوم المبردة - أظهر قياس درجة الحموضة  ارتفاعات بلغت أقصاها عند التبريد لمدة 14.7 يوم بعد المعاملة - أحدثت المعاملة بالأحماض العضوية تأثيرات دراماتيکيه على المحتوى الميکروبي للحوم الضان المعاملة مقارنة بالعينات التي ترکت ککاشف. حيث أوضح العد الکلي للمکروبات الهوائية انخفاضا معنويا تناسب طرديا مع فترة التبريد حيث بلغ الاختزال في متوسطات العد البکتيري أقصاه عند اليوم السابع للتبريد ووصلت 70.87  , 9.و64   ,71 و60.45% بالمعاملة بـ 1% و2% حمض لاکتيک و1% و2% وحمض الخليک على التوالي کذلک وصل الاختزال في حالة التبريد تحت الصفر 62.37 و62.53 و5796 و57.38% في ذات المعاملات على التوالي کذلک بالنسبة للعد الکلي للميکروبات المحيه للبرودة فقد بلغ الاختزال بينهما أقصاه عند اليوم السابع حيث کانت 49.54 و43.33و 53.36  و04 ,38% لذات المعاملات بالتوالي. کذلک الاختزال للمعاملة عند التبريد تحت الصفر بلغت 26.41 و15و 26.71 و 15.88% أحدثت المعاملة بالأحماض خفض في المحتوى للعد الکلي للميکروبات القولونيه بلغ أقصاه في اليوم السابع وبلغت نسبة الاختزال فيها 68.06 و65.24و 71.81و64.77% على التوالي – کانت نسبة الاختزال في التبريد تحت الصفر 35.06 و5.72 و 55.12 و 48.28% -أدت المعاملات لاختزال العد البکتيري للسالمونيلا حيث کانت في العينات الطازجة 4.8× 10 + 3.2 × 10 ² ولکن بعد المعاملة وصلت إلى الصفر عند اليوم السابع وکذلک عند التجميد - العد البکتيري للمکورات العنقودية – انخفض بدرجة کبيرة بعد المعاملة ووصلت نسبة الاختزال فى المتوسطات في اليوم السابع إلي 42.860 و60.53 و59.46 و33.33% بينما عند التجميد وصل الاختزال إلي 7.14و 64.91 و55.41 و60% على التوالي - العد الکلي للفطريات والخمائر أظهر انخفاضا شديدا بعد المعاملة بالأحماض حيث وصلت بعد 72 ساعة إلي حدود دنيا وبلغ عندها نسبة الاختزال 56.74 و52.07 و52.94 و39.02% بينما في مرحلة التجميد حدث ارتفاع بسيط في المتوسطات بالرغم من انخفاض نسبة الاختزال عما کان متوقع في هذه المرحلة - کان للمعاملة بالأحماض العضوية أثرا معنويا على البکتريا المحللة للبروتين حيث وصلت نسبة الاختزال في العد البکتريا لها 13.49 و 42.26 و 22.99 و 38.65% عند المعاملة بحمض اللاکتيک 1% و2% وحمض الخليک 1% و 2% على التوالي أما البکتريا المحللة للدهون فکانت نسبة الاختزال في العدد 32.86 و 59.87 و 31.86 و60.88% فى ذات المعاملات على التوالي

(1)

 تم تصنيف العصيات القولونية المعزولة عبر مراحل الدراسة واتضح التأثر بالمعاملة الحمضية حيث 2% أحدثت انخفاضا اکثر من 1% دون تأثر المواصفات الطبيعية نفس النتيجة لوحظت في السالمونيللا الملهبية والمکورات العنقودية الذهبية والفطريات المختلفة هذا وقد تم مناقشة الأهمية الصحية والاقتصادية للميکروبات المعزولة وشرح أهمية استخدام الأحماض العضوية( الخليک واللاکتيک) في خفضها واثر ذلک على الصحة العامة  

 

Summary

 

The present study was carried out to assess the ability of organic acids to improve the quality of fresh lamb meat chilled at 7 ْC for 24, 48, 72 hours, 7& 14 day and freezed at -18 ْC after treatment with organic acids (lactic and acetic 1&2%) which resulted in significant improvement of nearly all parameters over the control of 25 samples from different lamb carcasses. Such treatments exerted a significant antibacterial effect which is of public heath importance and prolong the shelf life of carcasses on trial. The pH value revealed highest record at 14 day chilling. The organic acids revealed dramatic effects as antimicrobial agent. The total aerobic bacterial count revealed reciprocal reduction percent 70.87, 64.09, 71.07 and 60.54% in chilling for 7 day after treatment with 1&2% lactic and acetic acid respectively. The reciprocal reduction percents were 62.37 to 62.S3% and 57.96 and 57.38% in 1& 2% lactic and acetic acids. On applying the psychrophilic bacteria the reciprocal reduction percent means at the 7^th day of chilling were 49.54, 73.33, 53.36 and 38.04% respectively with same acids treatments .On apply freezing for one month the reduction values reciprocal to the means were 29.41, 15.00, 26.71 and 15.88% respectively. The lowest records of total coliform counts were shown on the 7^th day chilling. The reciprocal reduction percent of means were 73.65, 65.04, 77.84 and 68.59. After month of freezing the corresponding reductions were 53.51, 45.51. 63.72 and 45% with acid treatments respectively. The reduction percent of total Enterobacteriaceae counts of the means were 68.06, 62.24, 71.81and 64.77% after 7 days of chilling lamb meat post acid treatment. Salmonella count revealed means zero after 7, 14 day of chilling lamb meat; also, means were zero after freezing for month post acids treatments. Staphylococcus aureus count: revealed highest reduction at the 7^th day post chilling and the reciprocal reductions were 42.86, 60.53, 59.46 and 33.33% respectively. Total mould and yeast count showed reduction percents of 56.74, 52.07, 52.94 and 39.02% after 72 hour of treated chilled lamb meat. After freezing, reduction percents were 26.97, 29.75, 16.99% in lactic acid 1, 2% and acetic acid 1% where count increased in acetic acid 2%. The means of Proteolytic bacterial count reduced to 13.49, 42.26, 22.99 and 38.65% in 1, 2% lactic acid and 1 & 2% acetic acid treated lamb carcasses. The lipolytic bacterial count reductions were 32.86, 59.37, 31.86 and 60.88% respectively. Coliforms were detected in lower incidence in the treated sample including E.coli, Enterobacter spp, Khlebsiella spp., Edwardesiella tarda and Serratea rubidea. The acid treatment lower the occurrence of  coliform where 2% concentration was more efficient than 1% The same results were detected in identified Staphylococcus aureus and Salmonella enteritidis in addition to the identified moulds

 

Key words:

 

Introduction

 

Meat is an important vehicle for food borne diseases such as salmonellosis and campylo bacteriosis. Many other organisms act as toxin producers and spoilage formers. Organic acids including acetic, fumaric, propionic, and lactic acids are added to foods to prevent or delay the growth of pathogenic or spoilage bacteria. The inhibitory effects of acids on microbial growth has long been used to preserve foods from spoilage (Podolak, et al., 1996).

 

(2)

The external contamination of meat constitute a constant problem in meat developing countries where the abattoirs itself have a large numbers of potential sources of contamination (Davis et al., 2000). Organic acids as antimicrobial agents for surface treatment of fresh meat have been used to prevent the growth bacteria during chill storage (ICMSF, 1982). Similarly in Europe it is considered a harmless constituent (leuck, 1980). This widely knowledge about absence of acute and chronic toxicity has led to the choice of lactic acid as decontaminating agent in food industry. Data are available on the potency of lactic acid spray as carcass decontaminant for lamb and beef (Fatema-Ali, 2001)Lactic and acetic acids are generally recognized as safe food additives. Both acids are based as apart of meat decontamination procedures, where they are more effective than many other technique and components (Gorman, et al., 1997). Numerous studies have reported on the effects of organic acids on bacterial populations as well as some pathogenic organisms(Dickson and Anderson, 1991, Hardin, et al., 1995 and Castillo, et al., 2001).

The object of the current research was to evaluate the effectiveness of acetic and lactic acids on microbial loads and characteristics of treated lamb carcasses across the chilling and freezing time.

 

Materials and Methods

 

- Collection of samples: From a total of 25 fresh representative lamb carcasses, randomly collected from different butchers shops at Behaira province, right fore limb and left hind limb were taken and packed in insulating containers and transferred as soon as possible to the laboratory for microbiological examination   

- Treatment of samples: The fresh samples without treatment were taken as control. Samples were sprayed with aqueous solutions of lactic acid 1and 2%, others were sprayed with acetic acid 1 and 2% and all samples were hanged for ten minutes to dry. Samples were put in chilling at 7 ْC for 24, 48, 72 hours, 7 and 14 days and frozen at -18 ْC for one month.

- Preparation of samples were done according to ICMSF (1982)

- Measurement of PH was determined by using Digital pH. Meter

- Microbial Examination

- Determination of Total aerobic bacterial count according to ICMSF (1982)

- Determination of Psychrophilic bacterial count according to ICMSF (1982)

- Determinatio of Total Enterobacteriaceae count according to ICMSF (1978).

- Estimation of Coliform according to ICMSF (1982)

- Detection of Salmonellae: was carried according to Andrews and AOAC (1984)

- Biochemical identification of Enterobacteriaceae and Salmonellae were carried according to Cruickshank, et al. (1975) and ICMSF (1982)

- Determination of Staphylococci were done according toCruickshank, et al. (1975) and ICMSF (1978)

- Biochemical identification of Staphylococcus aureus were carried according to (APHA, 1984)

- Total mould and yeast count were carried according toBailey and Scott, (1978)

- Identification of mould was carried according to Raper and Fennel (1965) and Samson, et al. (1995) for genes Aspergillus and Penicillium, while other genera were identified according to Zycha, et al. (1969), Barnett and Hanter (1972) and Samson, et al. (1995)

- Identification of yeasts was carried according to Loder (1967)

 

Results

 

Table 1: Means of pH of the examined treated lamb carcasses stored at 7 ^oC

 

Means in the same row followed by a similar letter do not differ significantly at p = 0.05.

PH of control samples = 5.60 ± 0.03.

 

 

	(3)

 

Table 7: Incidence of Enterobacteriaceae, Staphylococcus aureus and Mould & yeasts isolated from examined samples of treated and untreated lamb carcasses (n=25)

 

 

 

Discussion

 

The present study aimed to assess the ability of organic acids to improve the quality of fresh lamb meat chilled at 7 ْ C for 24,48,72 hours, 7, 14 day and freezed at -18ْ C for one month after treatment with 1,2% of both acetic and lactic acids. The gained results could be summarized as follow. pH value as illustrated in Table 1 revealed decline in pH values as 3.06 + 0.05 and 3.06 + 0,02 in treated samples with 2% acetic and lactic acids. after 24 hours of chilling, gradual increase was detected with time of chilling reached its maximum at 14 day of chilling and recording 6.08 + 0.04 and 5.60 + 0.08 in 1,2% lactic acid. Similar results were gained in acetic acid. These results agreed with those recorded by Kim (1988) who cited significant decrease in pH values of pork meat sprayed by acetic acid and stored at 4ْ C for 12-15 day.

Total aerobic bacterial count: Table(2)showeda mean bacterial count value of the examined control lamb sample of 3.74 × 10³ ± 3.88 × 10². After treatment with lactic acid 1%and acetic acid 1% it were 2.19×10³ ± 2.25× 10² and 2.06× 10³ ± 2.44× 10².  Using 2% lactic acid and acetic acid 2% the mean values declined to 8.8× 10² + 1× 10² and 8.56 × 10² + 1.08 × 10² c.fu /g. Successive decline in mean values of aerobic bacterial count with time of chilling after treatment reached in the 7^th day to 6.38 × 10²  + 0.53 × 10²  and 5.53 × 10² + 0.51× 10² and 5.96 × 10²  + 0.51× 10² and  5.13 × 10²  + 0.5 × 10²  cfu /g  in lactic acid 1&.2 % and acetic acid 1 and 2% respectively. While after 14day of chilling post treatment, slight increase was detected. The reduction percent of total aerobic bacterial count as illustrated in Table 3 revealed that, the best reduction percentages were 70.87, 64.09, 71.07and 60.54% at 7^th day chilling of lamb meat samples with lactic acid 1%,2% and acetic acid  respectively this could be attributed to the destructive effect of these acids on different microbes .in addition to the longer acidic phase which started after bleeding of animal. Nearly similar results were reported by Anderson and Marshall (1989), Mendonca, et al. (1989) Gauthier and Jacquet (1991), Anderson et al, (1992), Zerby et al. (1999) and Mahmoud (2004) all have agreed with reduction in total aerobic count. The freezing of treated samples for one month revealed the reduction percent varied from 62.37 to 62.53 57.96 and 57.38% respectively with using 1& 2% lactic acid and 1&2% acetic acid. That reduction percent could be attributed to the acid treatment effect, in addition to the effect of freezing on different microbes. Nearly similar results were reported by Arjyapitipum et al. (1999).          

Total psychrophilic bacterial count: Table 2 showed that, the mean value of total psychrophilic bacterial count (cfu/g) was 2.06 × 10³ + 2.85 × 10² .Treatment with lactic acid 1% & 2% and acetic acid 1% & 2 % revealed means as 1.53 × 10³ + 1.67 × 10^2,, 1.2 × 10³ + 1.5 × 10²  and 1.46 × 10³ + 1.82 × 10² and 1.02 × 10³ + 1.21 × 10² cfu/g respectively. The mean counts gradually decreased as after 7days of chilling reached 7.72 × 10² + 0.65 × 10², 6.8 × 10² + 0.66 × 10² and 6.81 × 10² + 0.72 × 10² and 6.32 × 10² + 0.64 × 10² cfu/g respectively, more decline was recorded after 14 day of chilling of meat samples as shown in Table 2. That significant decrease of total phychrophilic count at p = 0.05 agreed with those reported by Andersen and Marchall (1989), Dorsa et al. (1998) and Lee et al. (1998).

Result in Table 4 denote that the reduction percent of psychrophilic count showed the best reduction percent at the 7^th day of chilling of treated lamb meat samples as 49.54, 43.33, 53.36 and 38.04 %. Nearly similar result were reported by Anderson and Marshall (1989), Dickson, (1991, and Ariyapitipum et al. (1999).

 

(11)

Total Coliform count Table 4 Showed excessive decline with the time of storage at chilling after treatment with 1%, 2% lactic and acetic acids where in control the mean value was 1.53 × 10³ + 1.82 × 10² cfu/g. After treatment means declined to 9.83 × 10² + 1.31 × 10² , 6.46 × 10² + 0.99 × 10^{2 ,} 1.02 × 10² + 1.41 × 10 ² and 4.6×10² + 0.84 10²  cfu/g respectively after 14 day of chilling post treated it reached to 4.63 × 10² + 0.48 × 10² , 3.93 × 10² + 0.43 × 10² and 4.34 × 10² + 0.43 × 10² , 3.46 × 10² + 0.43 × 10² cfu/g. Nearly similar results were recorded by Anderson and Marshall (1989), Castillo, et al. (1998), Dorsa et al. (1998) and Zerby   et al. (1999)

The reduction percent as illustrated in Table 5 denoted that, at 7^th day of chilling the reduction rat of the treated samples reached 73.65, 69.04, 77.84 and 68.59%. after application of lactic acid and acetic acid 1%&2% respectively, while in freezing the reduction percent was  53.51, 45.51, 63.72 and 45.00%, respectively. Similar results were recorded by Anderson and Marshall (1989), Cutter and Siragusa (1994), Cabedo      et al. (1996) and Ramirez, et al. (2001).

Total Enterobacteriaceae count: Table 4 revealed that, the mean value of control non treated sample was 2. ×10³ ± 2.55× 10³ after treatment with 1%,2% lactic acid acetic acid the reduction in mean values gradually increase tell 7^th day reached 3.69 ×10² + 0.43 × 10^{2 ,} 3.25 ×10² + 0.4 × 10^{2 ,} 3.58  ×10² + 0.4 × 10² and 2.97 ×10² + 0.38 × 10². The higher concentration 2% acetic acid showed significantly (p < 0.05)  lower count compared to other acid treatment. Nearly similar results were recorded by Anderson et al. (1992) and Ariyapitipun et al. (1999). In the 7^th day of chilling. The highest reduction percent 68.06, 65.24, 71.81, and 64.77% were recorded as in Table 5. Similar results reported by Mendonca, et al. (1989) and Anderson et al. (1992)

Table  7  revealed that, the isolated Enterobacteriaceae from the examined lamb carcasses at variable percentages were Edwardsiella tarda, Enterobacter arerogenes, Enterobacter agglornerans, Escherichia coli., Klebsiella oxytocea, Klebsiella pneurnoniae sub.ozaene  and Serratia  rubide  in the control and treated samples as well as during. Some isolates were found in control samples as well as in treated one during chilling and freezing.

The presence of coliforms in the food pointed at the unsanitary condition of slaughter and processing plants as they are indicative of fecal pollution either from workers, lamb or all equipment kept in touch with them. Efforts should be directed towards thorough cleaning and sanitizing all equipment come in contact with lamb carcasses and workers, thorough cleaning of lamb carcasses and hygienic measures should be adopted during different stages.

Salmonella count: Table  6 shows the mean count of 25 examined lamb carcasses for salmonella as control was 4.8 × 10² + 3.2 × 10² After treatment with lactic acid 1% and 2%, ctic acid 1& 2% the means of salmonella count gradually decreased till reach 0.6 × 10² + 0.00, 0.2 × 10²+ 0.00, 0.6 × 10²  + 0.2 × 10² and 0.4 × 10² + 0.00 respectively. After 72 hour of treatment reduction rate became 76.92, 83.33, 78.57 and 69.23%. Nearly similar results were reported by Anderson and Marchall, (1990), Anderson et al. (1992), Conner, et al. (1997) and Zerby et al. (1998)

            Table  7 denote the identified Salmonella enteritidis  isolated from the examined lamb carcasses incidentally appeared with its percentage as 2 (8%) in the control, while in lactic acid (1% and 2%) treated samples, the percentages were 8 (32%) and 3 (12%), respectively. In acetic acid (1% and 2%) treated samples it was shown as 5 (20%) and 3 (12%).               

Salmonella remains one of the most common causes of bacterial food poisoning and associated with the consumption of meat. These organisms colonies the alimentary tract and excreted in the feces by infected animals thereby the human food chain. Salmonella typhimurium and Salmonella enteritidis are numerically the predominant serotypes affecting meat causing human infection through consumption of meat.

Staphylococcus aureus count: Table 6 shows a mean values of 2.44 + 0.67 × 10² in control examined. After treating samples with 1% & 2% lactic acid and acetic acid means were gradually decreased with continuous chilling till 7^th day reached to 0.8 × 10² ± 0.22 × 10^2, 0.45 × 10² + 0.19 × 10², 0.6 × 10² + 0.22 × 10² and 0.50 × 10²  + 0.3 × 10²  cfu/g, respectively. That highest reduction forms 42.86, 60.86, 59.46, 33.33% as well as samples treated with 1% & 2% lactic acid and 1% &2% acetic acid after freezing the treated samples the reduction percents as 7.14, 64.91, 55.41 and 60% respectively Table(3) Nearly similar results were reported byMahmoud (2004)

 

(12)

Staphylococcus aureus: Could be isolated from the same examined samples as 23 (92%) lactic acid 1%, 14 (68%) lactic acid 2%, 22 (88%). acetic acid 1%, and 16 (64%) acetic acid 2%.

Staphylococci are widespread in nature; they are members of the normal bacterial flora of the skin and mucous membranes. Staphylococcus aureus was frequently involved in case of mastitis and suppurative infections. Hence contamination of food with the organism mostly occurs due to sanitary neglected precautions during production or processing. When conditions are favorable for growth and multiplication of the organism in food, the enterotoxins are produced and consequently the food is likely to be dangerous. Enterotoxigenic Staphylococcus aureus has been implicated in several food poisoning outbreaks from consumption of lamb carcasses and its products (Beckers, 1982).

Total mould and yeast count: Table 6  revealed a mean of 2.93 × 10²  + 0.3 × 10² cfu/g, in control sample. When lactic acid 1% &2%, acetic acid 1%, 2% were applied the mean count of mould and yeasts continued to decline with time of chilling reached to 0.77 × 10² + 0.08 × 10², 0.58 × 10² + 0.11 × 10² , 0.72 × 10²  + 0.07 × 10²  and 0.50 × 10²  + 0.06 × 10² respectively after 72 hour of chilling, the reduction percent of yeasts &mould as in Table 5 recorded as 56.74, 52.07, 52.94 and 39.02% respectively. Nearly similar results were recorded by Samelies et al. (2002). A slight rising of mean values was recorded after 7 and 14 day of chilling. That could be attributed to optimal pH of mould, yeast growth as recorded by Samelis et al. (2002) who mentioned that acids containing washings were selective for growth of yeast. Slight decline recorded after freezing for one month. This was attributed to that mould and yeast grow at chilling and freezing as reported by Samelis et al. (2002). Table 7 also reveals that Aspergillus flavus, Aspergillus niger, Fusarium, Mucor and Penicillium could be isolated from examined treated lamb samples at variable percentages. From the public health point of view, species of Aspergillus may induce pulmonary aspergillosis and allergy, and skin infection (Al-Doory, 1980and Washington, 1981) for meat handlers. Penicillium spp. may induce pulmonary infection (Washington, 1981)Mucor and Rhizopus spp. are prevalent in food and may induce infection in lungs, gastrointestinal tract and skin (Al-Doory, 1980and Washingto, 1981).

Proteolytic and lipolytic bacterial counts: Both of proteolytic and lipolytic bacterial count when applied lactic acid 1 and 2%, acetic acid 1&2% revealed reduction in their mean count. The highest reduction percent was apparently with using lactic acid 2% as 42.26% and 59.87% for proteolyic and lipolytic bacterea, while that of acetic acid 2% was 38.65 and 60.88% respectively. These result agreed with that reported by Gill and Newton (1982) Anderson et al. (1988) Katoh et al. (1991) and Hassan (2001) 

The isolated strains of economic importance as they are food spoilage microorganisms beside they are of public health hazard, especially E. coli which causes acute infection to adult. It also causes infections of the urinary tract (Cruickshank, et al., 1975).

 

Referances

 

Al-Doory, Y. (1980): Laboratory Procedures in Clinical Microbiology. Springer Verlag, New York, Inc.

Anderson, M.E.H.; Huff, E.; Naumann, H.D. and Marshall, R.T. (1988): Counts of six types of bacteria on lamb carcasses dipped or sprayed with acetic acid at 25 °C or 55 °C and stored vacuum packaged at 0 °C. J. Food Prot., 51: 874-877.

Anderson, M.E.H.; Marshall, R.T.; Stringer, W.C. and Naumann, H.D. (1977): Combined and individual effects of washing and sanitizing on bacterial counts of meat - a model system. J. Food Prot., 40; 668-670.

Anderson, M.E. and Marshall, R.T. (1989): Interaction of concentration and temperature of acetic acid solution on reduction of various species of microorganisms on beef surfaces. J. Food Prot., 52: 312-315.

Anderson, M.E. and Marshall, R.T. (1990): Reducing microbial population on beef tissues concentration and temperature of lactic acid. J. Food Safety, 10: 181-190.

 

( 14 )

Anderson, M.E.; Marshall, R.T. and Dickson, J.S. (1992): Efficacies of acetic lactic and two mixed acids in reducing number of bacteria on surfaces of lean meat. J. Food Safetv 12(2): 139-i47.

 

(13)

Andrews, W.F. and AOAC (1984): Isolation and identification of Salmonella species. In: Food and Drug Administration, Division of Microbiology Center for Food Safety. Bacteriological Analytical Manual, 6t" edition. Published by Association of Official Analytical Chemists, Arlington, Virginia, 22201-3301 USA. Chapter 7.

Anonymous (1982):Rules and regulations. Fed. Regist. 47:184

APHA (American Public Health Association) (1984): Compendium of Methods for Micro biological Examination of Foods. 2°d Ed., American Public Health Association, Washington, DC.

Ariyapitipun, T.; Mustapha, A. and Larke, D. (1999): Microbial shelf-life determination of vacuum-packaged fresh treated with polylactic acid, lactic acid and nisin solution. J. Food Prot., 62: 913.

Bailey, W.R. and Scott, E.G. (1978): Diagnostic microbiology, A Textbook for the Isolation and

Barnnett, H.L. and Hunter, B.B. (1972): Illustrated Genera of Imperfect Fungi. 2^nd ed., Burgess Publishing Company.

Beckers, H.J. (1982):Incidence of foodborne disease in the Netherlands and annual summary 1979. J. Food Prot., 45(14): 13-36.

Cabedo, L.; Sofos, J.N. and Smith, G.C. (1996): Removal of bacteria from beef tissues by spray washing after different times of exposure to fecal material

          . J. Food Prot. 59(12)1284-1287.

Castillo, A.L.; Lucia, M.; Goodson, K.J.; Savell, J.W. and Acuff, G.R. (1998): Comparison of water wash, trimming, and combined hot water and lactic acid treatments for reducing bacteria of fecal origin on beef carcasses. J. Food Prot., 61:823-828.

Castillo, A.L.; Lucia, M.; Merado, I. and Acuff, G.R. (2001):In-plant evaluation of a lactic acid treatment for reduction of bacteria on chilled beef carcasses J. food prot. 64 (5):   738-740.

Conner, D.E.; Kotrola, J.S.; Mikel, W.B. and Tamblyn, K.C. (1997): Effect of acetic­lactic acid treatment applied to beef trim on populations of Escherichia coli 0157:H7 and Listeria monocytogenes in ground beef. Journal of Food Protection, 60(12), 1560-1563.

Cruickshank, R.: Duouid, J. R.; Marmion, B. D. and swain, R. H. A. (1970-1975): Medical Microbiology. The practice of microbiology. VIII 11^th and 12^th Ed., Churchill Livingstone Edinburgh.

Cutter, C.N. and Siragusa, G.R. (1994): Efficacy of organic acids against Escherichia coli 0157:H7 attached to beef carcass tissue using pilot scale model carcass washer. J. Food Protect. 57: 97-103.

Davis,M.H.;Hadley,M.J.;Stosic,P.J.;Webster,S.D.(2000):Production of factors that influence the hygienic condition of finished beef cattle J.Vet.Rec.14,179

Diclcson, J. S. (1991): Control of Salmonella ryphimurium, Listeria monocytogenes and Escherichia coli 0157:H7 on beef in a model spray chilling system. J. Food Sci. 56:191-193.

Dickson, J. S. and Anderson, M. E.(1991): Control of Salmonella on beef tissue surfaces in a model system by pre- and post-evisceration washing and sanitizing, with and without spray chilling. J. Food Protect. 54, 514-515.

 

(14)

( 15 )

Dickens, J. A.; Lyon, B. G.; Whittemore, A. D. and Lyon, C. E.(1994): The effect of an acetic acid dip on carcass appearance, microbiological quality, and cooked breast meat texture and flavor. Poultry Science 73: 576-581.

Dorsa, W. J.; Cutter, C. N.; Siragusa, G. R. (1998):Long-term effect of alkaline, organic acid, or hot water washes on the microbial profile of refrigerated beef contaminated with bacteria pathogens after washing. Journal of Food Protection 61 (3) 300 -3 ) 06

Fatema-Ali ,H.(2001) Evaluation of the sanitary measures adopted in a municipality abattoir

             Ph.D. Vet.Sci., Fac.Vet.Med. Beni Suef, Cairo Univ.

Gauthier, M ., and jacquet, B. ( 1991 ) : Decontmination des viands triees de porc destinees a la transformation par les acides organiques. Viandes prod. Carnes. 12:131 -135 .

Gill , c.o. and Newton , K .G. (1982) : Effect of lactic acid concentrtion on growth on meat of gram – nagative psychrotrophs from a meatworks. Appl. Environ. Microboil., 43: 284 – 288 .

Gorman,B.M.;Kochevar,S.L.;Sofos,J.N.;Morgan,J.B.;Schmedt,G.R.and Smith,G.C.(1997)

                Changes on beef adipose tissues following decontamination with chemical solutions or water at 35  ْC and 74  ْC J.Muscl Food  8:185-197

Hardin,M.D.;Acuff,G.R.;Lucia,L.M.;Oman,J.S.andSavell,J.W.(1995)  Comparison of methods for decontamination from beef carcass surface J.Food protect.58:268-374

 

Hassan, F. M. (2001): Evaluation of the sanitary measures adopted in a municipality abattoirs.

                   Thesis ph. D.Fac. Vet. Med., Cairo Univ .

ICMSF (International Commission on Microbiological Specification of Foods) (1978): Microorganisms ecology of food. University of Toronto Press, Toronto, Ontario, Canada.

ICMSF (International Commission on Microbiological Specification of Foods) (1982): Microorganisms in food l. Salmonellae. 2^nd Ed. University of Toronto Press, Toronto, PP.201-218.

Katoh, K.; Nakamura, M.; Usagawa, T. (1991): The curing of pork with organic acid­ containing reduced-salt brine. Animal Science and Technology 62 (2) 161-168

Kim, D.G. (1988): Effects of acetic acid on microbiological and physicochemical properties of fresh pork. Journal of the Korean Society of Food and Nutrition 17 (3) 215-219

Lee, S. H.; Seung, S. K; Kim, S. M.; Kim, D. K.; Jo, O. K. and Jeong, Y. S. (1998): Effects of organic acids and vacuum packaging on shelf life of Hanwoo beef. Korean Journal of Animal Science 40(3)261-268.

Lodder, J, and Kreger, Van Rij, N. J. W. (1967): The Yeast, a taxonomic study. North Holland Publ. Co., Amsterdam.

Leuck,E.(1980):Antimicrobial food additives Springer Verlag , Neo York

 

Mahmoud,M.A.(2004) : Sanitary evaluation and reduction trials for surfaces microbial   contamination of sheep carcasses at Mansoura abbatoir M.V.Sc.Thesis Fac.Vet.Med.Mansoura Univ.

Mendonca, A. F.; Molins, R. A. A.; Walker, H. W. (1989): Microbiological, chemical, and '      physical changes in fresh, vacuum-packaged pork treated with organic acids and salts Journal of Food Science 54 (1) 18-21.

Podolak,R.k.J.F.Zayas,C.L.,Katner and D.y.c.fung (1996) Reduction of bacterial population on vacuum-packaged ground beef patties with fumaric and lactic acids.J.Food Prot.59-1037-1040

Ramirez, A. J.; Acuff, G. R.; Lucia, L. M. and Savell, J. W. (2001): Lactic acid and trisodium phosphate treatment of lamb breast to reduce bacterial contamination. J. Food Prot. 64, 1439-1441.

Raper, R. K. B and Fennel, D, I. (1965): The genus Aspergillus. Williams and Wilkins, Baltimore. Cited after Khalil, R (1995): M. V. Sc. Thesis, Fac. Vet. Med., Alex., Univ.

 

(15)

Samelis J, Sofos JN, Kendall PA, Smith GC. (2002): Effect of acid adaptation on survival of Escherichia coli 0157:H7 in meat decontamination washing fluids and potential effects of organic acid interventions on the microbial ecology of the meat plant environment. J Food Prot., Jan; 65(1): 33-40.

Samson, R. A.; Hockstra, E. S.; Frisvad, J. C. and Filtenburge, D. (1995): Introduction to food borne fungi. 4t"'Ed., Central Bureau voor Schimmel Culture, Baan Delft.

             Printed by Prison & Looyen Wageningen,  The Netherlands.

 

( 16 )

Washington, J.A. (1981): Laboratory Medical Mycology. Lea & Febiger.

Zerby, H.N.; Murphree, R.; Belk, K.E.; Sofos, J.N.; Schmidt, G.R.; IIardin, M.W.; Lloyd, W.L. and Smith, G.C. (1998): Intervention Strategies for Reducing Microbiological Contamination On Pork Variety Meats. Final Report to the U.S. Meat Export federation

            and to the National Pork Producers Council.

Zerby, H.N.; Belk, K.E.: Hardin, M.; Sofos. J.N. and Smith, G.C. (1999): Levels of microbiological contamination of pork carcasses during slaughter. Annual Meeting. International Association of Milk, Food and Environmental Sanitarians, 86:T1 l.

 

(16)

Zycha, H.; Siepmann, R. and Linnnemann, G. (1969): Mucorales, eine Beschrelbung alter Gattungen und Arten dieser Pilzgruppe. D. 3301 Lehre J. Gramer.

Table (5) Reduction percentages of total coliform, Enterobacteriaceae, Salmonellae

 and Mould &Yeast count of examined treated lamb carcasses

 

 

 

 

The reduction percent was the deviation of treated means relative to control mean in the fresh state in chilling and freezing state

         It was the deviation of treated means relative to the treatment means in fresh state

        Coli=Coliform                   Ent.  .=   Enterobactereaceae               Salm.  =   Salmonellae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

	( 7 )

 

 

 

Table (3) Reduction percentages of total aerobic, psychrophilic and . Staph . aureus  count

of the examined treated lamb carcasses (n=25)

 

   

The reduction percent was the deviation of treated means relative to control mean in the fresh state in chilling and freezing state

    ( It was the deviation of treated means relative to the treatment means in fresh state)

        Chil = Chilling        aerob . = aerobic        Psychro = Psychrophilic

 

 

 

 

 

	( 5 )

 

 

 

 

 

Table (2) Means of total  aerobic and total psychrphilic bacterial counts ( cfu / g ) of the examined lamb carcasses before and after application of acid treatment ( n = 25 )

 

 

 

 

Means in the same raw followed by same letters do not differ significantly at p=0.05 within each of aerobic and Psychrphilic counts

Mean value of control samples in total aerobic bacterial count =3.74 × 10³ ± 2.88 × 10²  

Mean value of control samples in total Psychrphilic bacterial count = 2.06 × 10³ ± 2.85 × 10²  

 

 

 

	( 4 )

 

 

 

 

 

 

 Table (4) Statistical analytical results of means of total coliform (M.P.N/g) &Enterobacteriaceae count (cfu/g) of examined lamb carcasses before and after application of acid treatment (n = 25)

 

 

Enterob = Enterobacteriaceae

Means in the same raw followed by same letters do not differ significantly at p=0.05 within each of Coliform and Enterobacteriaceae count

Mean value of control samples in total Coliform count =1.53 × 10³ ± 1.82 × 10²  

Mean value of control samples in total Enterobacteriaceae count = 2.00 × 10³ ± 2.55 × 10²  

 

 

 

 

	(6)

 

Table (6) Statistical analytical results of means of total Salmonellae count , Staphylococcus aureus and Mould &yeast  count (cfu/g) of the examined lamb carcasses before and after application of acid treatment ( n = 25 )

 

 

 

 

 

Salm.=Salmonella                           Staph.=           Staphylococcus aureus

Means in the same raw followed by same letters do not differ significantly at p=0.05 within each of Salmonella and Staphylococci count

Mean value of control samples in total Salmonella count =4.80 × 10² ± 3. 2 × 10²  

Mean value of control samples in total Staphylococcus aureus count = 2.44 × 10² ±.67 × 10²  

Mean value of control samples in total Mold &yeast count = 2.93 × 10² ±.30 × 10²  

Hr = hour

 

 

 

 

 

 

 

	( 8 )

 

 

 

 

Table (8): Statistical analytical results of total proteolytic and lipolytic counts (cfu/g) of the examined lamb carcasses

 

 

Number of examined samples per treatment = 25.

Reduction % was the deviation of treatment means relative to the control mean.

Means in the same row followed by the same letter do not differ significantly P =0.05.

 

 

 

 

	( 10 )

 

دور خميرة البيرة في تحسين المناعة النوعية وغير النوعية  في دجاج اللحم في سوريا

    * ط.ب. منى الشرابي

   **  أ.د. محمد فاضل

ملخص البحث :

أجريت الدراسة على (500) طيراً من إحدى الهجن التجارية لدجاج اللحم , وقد  استخدمت خميرة البيرة Brewer`s yeast  أو ما يدعى بالاسم العلمي سکروميزس سيرفيسيا Saccharomyces Cerevisiae  , بشکلٍ مقتولٍ أو (معطل) کمتممٍ علفي, حيث أنها تتميز باحتوائها على قيمةٍ غذائيةٍ مرتفعةٍ إضافة إلى احتوائها على مستوىٍ عالٍ من الأحماض النووية , و عدم وجود آثارٍ سلبيةٍ عند استخدامها بنسبٍ محدودةٍ وهي مادةٌ طبيعيةٌ, ولا تترک أية ثمالاتٍ في اللحم أو البيض .

استخدمت الخميرة المقتولة على شکل بودرة , تم خلطها مع العلف المستخدم حسب خطة الدراسة أثناء عملية تصنيع العلف المستخدم في التجربة , وحسب الجرعة المحددة في خطة البحث  وهي 1000غ خميرة لکل طن علف .

وذلک بغية مقارنة تأثير هذه الخميرة على الاستجابة  المناعية النوعية وغير النوعية لمرض الجراب المعدي , وذلک باستخدام ثلاث أنواع من اللقاحات التجارية المستخدمة في سورية ضد مرض التهاب الجراب المعدي (الجمبورو) , وهم لقاحين مستوردين (رقم1- رقم2) , ولقاح مصنع محلياً (رقم3) , و قد أثبتت الدراسة وجود فروق معنوية واضحة بين مجاميع الشاهد ومجاميع الدراسة  التي أضيف لعليقتها خميرة البيرة (الجعة ) , خلال جميع مراحل التربية. سواءً بالنسبة لمعايير الأضداد لمرض الجراب المعدي حيث کانت قيمة= p  (0.0008) .

و أثبتت الدراسة وجود فروقٍ معنويةٍ واضحةٍ بين مجاميع الشاهد ومجاميع الدراسة  التي أضيف لعليقتها خميرة البيرة (الجعة ) , خلال جميع مراحل التربية  سواءً بالنسبة للنسب المئوية للخلايا اللمفاوية أو المستغيرات التي کانت مرتفعةً في مجاميع التجربة عن مثيلتها في مجاميع الشاهد بقيمٍ معنويةٍ واضحةٍ 0.0001) = p  ) . p<0.05)

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

*طالبة دکتوراه – کلية الطب البيطري – جامعة البعث

**أستاذ أمراض الدواجن – کلية الطب البيطري – جامعة البعث

 

 

The Role of Brewer`s Yeast in the Improvement of Specific and non- Specific Immunity in Broiler Chickens in Syria

Dr  Mona  Al. Sharabi **

Dr  Mohammad Fadel *

Summary :

           The study was conducted on (500) commercial broiler chickens, it has been used Brewer `s yeast, or the so-called scientific name Saccharomyces Cerevisiae in inactive cells as a feed additives.

           It contains a high nutritional value in addition to containing a high level of Nucleotides . There are no negative effects when it is used in a limited rates . It is a natural substance and it doesn’t leave any residues in meat or eggs .

           The inactive Yeast was used in the form of powder which was mixed with the feed used by the study plan during the feed manufacturing process used in the experiment.  and  according to the specified dose in the research plan, 1000 g yeast per ton feed.

          In order to compare the impact of this yeast on the specific  and non- specific immunity of infectious bursal disease ( IBD )  by using three types of commercial vaccines used in Syria against infectious bursal disease . They are two imported vaccines ( 1,2 ) and a local vaccine ( 3 ) .

         The study has confirmed that there were clear significant variances between control and study groups  which added to its feed a yeast beer during all stages of breeding either for titers antibodies for IBD ( P value =  0.0008 ).

         The study has confirmed that there were clear significant variances between control and study groups  which added to its feed a yeast beer during all stages of breeding either for the percentage of lymphocytes which were higher in study groups than in control groups in clear significant variances ( P value =  0.0001 ). ( P < 0.05 ).

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

*  Professor of Poultry Diseases, Faculty of vet. Med. , Al-baath university , Hama, Syria .

* * phD student in veterinary science , Department of Poultry Diseases , Veterinary Faculty , Al-baath university , Hama, Syria .

 

مقدمة                                                                    

تلعب المناعة الغذائية (Immuno-nutrition) دوراً واعداً في الوقاية من الأمراض المعدية Yamauchi, et al,2002 )) ، ، و تعتبر النيکلوتيدات النووية عبارة عن وحدات متسلسلة ضمن الخلايا وهي مهمة حيوياً لأداء وظائف العضويات الحية .

يعتبر مرض الجراب المعدي (IBD) أو مرض الجمبورو من أهم الأمراض التي تؤدي إلى تثبيط مناعي في قطعان الدواجن التجارية , ويؤثر بشکل رئيسي على الطيور الفتية (Lukert et al ,1997) , ويعتبر استئصال مرض الجراب المعدي صعباً جداً نظراً لثباتية الفيروس العالية في البيئة , والطريقة الأساسية الوحيدة والفعالة کما هو الحال في الأمراض الفيروسية الأخرى عند الدواجن هي التحصين ضد مرض الجراب المعدي إضافةً إلى إجراءات الأمن الحيوي المعروفة واللقاحات المستخدمة حالياً أما لقاحات حية أو مقتولة (معطلة) .

إن الاستراتيجيات الأکثر فاعلية للتحکم بمرض الجراب المعدي تشمل التحصين لطيور الأمات بلقاحات معطلة زيتية , لتزويد الأمهات بالأضداد التي تنقلها بدورها إلى أنجالها من خلال مح البيض . أو تمنيع الطيور الفتية باللقاحات الحية المضعفة في مراحل مبکرة من العمر .

تصاحب بعض أنواع اللقاحات الحية حالة تثبيط مناعي عابر , والتي يمکن أن تسبب آفات مشابهة للخمج الطبيعي عند الطيور المحصنة (Muller et al .,2002) .

ويوجد حالياً بعض المعدلات المناعية المناسبة Immunomodulator , والتي من خلالها  يمکن أن تحد من تأثيرات التثبيط المناعي للقاحات الحية , مثل مادة          L-arginine   حيث تنشط و تحرض هذه المادة المستخدمة کمتممٍ علفي العمليات الوظيفية للأنماط الخلوية المختلفة , والموجودة في الجهاز المناعي مثل الخلايا القاتلة الطبيعي Natural Killer cells (NK) , والبلاعم والخلايا اللمفاوية ذات النمط B-T .(Park et al .,1991; Dejonge et al ., 2002 ) .

وحيث أن العديد من المُعدلات المناعية ذات النمط الوراثي الحيوي تؤدي إلى تحسين أداء الجهاز المناعي , وخاصة تلک المعدلات المناعية ذات المنشأ الطبيعي والتي يتمثل ترکيبها بالمستقبلات النيکلوتيدية النووية الطبيعية , والتي تتضمن البريميدات ومستقبلات البيريميدات والبورينات , والتي تتواجد في ترکيب خميرة الجعة (البيرة) کمکون أساسي لهذه الخميرة بالإضافة أنها تحتوي على مجموعة  فيتامينات B المرکبة وعنصر السيلينيوم , ونظراً لأن مرض الجراب المعدي يعتبر من أهم الأمراض التي تؤدي إلى عوزٍ  في الجهاز المناعي , فإن هناک حاجةٌ إلى (تحسين مناعة الطائر) أو تنشيط الجهاز المناعي للطائر من خلال أنظمةٍ مناعيةٍ داعمةٍ , تعمل على تحسين المناعة اعتباراً من البنية الخلوية الرئيسية المکونة من  RNA   و  DNA  (Abbas ,2001) .

أشار بعض الباحثين مثل الباحث (Whitehead,2003 ) ,إن  إضافة مرکباتٍ تحوي على النيکلوتيدات النووية في المرکزات العلفية سوف يساعد في تطوير الخواص البنائية المعوية , وبالتالي تحسين وظائف القناة المعوية .

ولذلک فإن إضافة خميرة البيرة  (الجعة) الحاوية على مثل هذه النيکلوتيدات النووية سيؤدي بشکلٍ غير مباشر إلى تحسين معنوي في طول الزغابة المعوية و زيادة في عمق الجزء المخفي للزغابة في منطقة الصائم , وبالتالي امتصاصٍ أکبر للمواد الغذائية , ينتج عنه تحسينٌ مناعيٌ أفضل , وسيساهم ذلک في معدل أفضل للکسب الوزني .

استخدمت خميرة البيرة Brewer`s yeast , أو ما يدعى بالاسم العلمي سکروميزس سيرفيسيا Saccharomyces Cerevisiae  . بشکلٍ مقتولٍ أو (معطلٍ) کمتمم علفي , استخدم في تغذية الدواجن نظراً لاحتوائها على قيمةٍ غذائيةٍ مرتفعةٍ , و عدم وجود آثارٍ سلبيةٍ عند استخدامها بنسبٍ محدودةٍ کمتممٍ علفي.

(Carter, H.E and Phillips, 1944 ., Bhattacharjee, 1970) .

کما وجد الباحث (Stone, 1998) , أن استخدام خميرة سيرکومايسس سرفاي في تغذية دجاج اللحم کمادةٍ طبيعيةٍ توفر الفيتامينات وخاصة مجموعة فيتامين B وکذلک البروتين ذو القيمة البيولوجية العالية بعيداً عن السموم وعن المواد المثيرة للحساسية أو المرکبات السرطانية عند استخدام مرکبات صنعية غير طبيعية .

مواد وطرق العمل Materials and Methods  :

مواد العمل Materials :

1-  الصيصان :

تم تربية (500 ) طائر بعمر يوم  واحد من أحد الهجن التجارية ، تم الحصول عليها  من إحدى المزارع التجارية لتربية قطعان أمات دجاج اللحم ( الفروج )  ، ُقدمت للطيور عليقةً محبحبةً بمراحل مختلفة (مرحلة أولى و مرحلة ثانية ) .

2- خميرة البيرة (الجعة ) :

استخدمت خميرة البيرة Brewer`s yeast , أو ما يدعى بالاسم العلمي سکروميزس سيرفيسيا Saccharomyces Cerevisiae  , بشکلٍ مقتولٍ کمتممٍ علفي استخدم في تغذية الدواجن نظراً لاحتوائها على قيمةٍ غذائيةٍ مرتفعةٍ إضافةً إلى احتوائها على مستوىٍ عالٍ من الأحماض النووية , و عدم وجود آثارٍ سلبيةٍ عند استخدامها بنسبٍ محدودةٍ کمتممٍ علفي.

واستخدمت الخميرة المقتولة على شکل بودرة تم خلطها مع العلف المستخدم حسب خطة الدراسة أثناء عملية تصنيع العلف المستخدم في التجربة بعد أن تم تحضيرها بشکلٍ مقتولٍ من خلال تعريضها لبخار لمدة  (4) ساعات مع الحفاظ على درجة الحرارة (71˚) م وتم حفظها البراد في الدرجة (4˚) م في حاويات مغلقة و من ثم تم تعقيمها قبل الاستعمال بوضعها بالأوتوغلاف أو ما يدعى بالصاد الموصد لمدة (20) دقيقة تحت ضغط (15) بار (BAR) و بدرجة حرارة (115) درجة مئوية

  وحسب الجرعة المحددة في خطة البحث  وهي 1000غ /طن من العلف .

طرق العمل : Methods

1- مجاميع الدراسة  The Study Groups :

استخدم ( 500 ) صوص  بعمر يوم  واحد ، من أحد الهجن التجارية ،  ُقسمت الطيور إلى عدة مجاميع مستقلة عن بعضها کالتالي :

مجاميع الشاهد : شملت (200) طير قدمت لها عليقةٌ محبحبةٌ خاليةٌ من خميرة البيرة (الجعة ) قسم الشاهد إلى ثلاث مجاميع وفقا لنوع لقاح الجمبورو الذي سيتم تحصين الطيور به :

المجموعة الأولى : مجموعة  الشاهد رقم (1) : وهي (66) طيراً قدمت لها عليقةٌ خاليةٌ تماماً من الخميرة حصنت باللقاح رقم (1).

المجموعة الثانية : مجموعة الشاهد رقم (2) : وهي (66) طيراً قدمت لها عليقهٌ خاليةٌ تماماً من الخميرة حصنت باللقاح رقم (2).

المجموعة الثالثة : مجموعة الشاهد رقم (3) : وهي (68) طيراً قدمت لها عليقةٌ خاليةٌ تماماً من الخميرة حصنت باللقاح رقم (3). 

مجاميع التجربة : وهي عبارة عن (300) طيراً قدمت لها عليقةٌ  محبحبةٌ تحوي على خميرة البيرة أو الجعة بنسبة (1000) غ / طن من العلف  بدءاً من اليوم الأول من التجربة وحتى نهاية التجربة بعمر (42) يوماً  وقسمت هذه المجموعة إلى ثلاث مجاميع حسب لقاح الجمبورو الذي سيعطى للطيور .

المجموعة الأولى : مجموعة التجربة رقم (1) :  وتحوي على (100) طير تم تحصينها باللقاح رقم (1) قدمت لها عليقةٌ  تحتوي على خميرة البيرة بنسبة (1000) غ / طن .

 المجموعة الثانية : مجموعة تجربة رقم (2) : وهي تحوي على (100) طير  تم تحصينها باللقاح رقم (2) قدمت لها عليقةٌ  تحتوي على خميرة البيرة بنسبة (1000) غ / طن .

المجموعة الثالثة : مجموعة تجربة (3):  وهي تحوي على (100) طير  تم تحصينها باللقاح رقم (3)  قدمت لها عليقةٌ  تحتوي على خميرة البيرة بنسبة (1000) غ / طن .

وقد تم  تغذية الطيور بعلف محبحب ، وتم مراعاة الاحتياجات الغذائية حسب متطلبات الطيور في جميع مراحل التربية .

عينات الدم Blood Samples

ُوقد تم جمع عينات الدم دورياً و بفترة زمنية فاصلة (5-7) أيام ، تم إضافة مانع تخثر لها وهو EDTA   تم أخذها من جميع مجاميع الدراسة, وذلک من أجل عمل شرائح دموية للعد التفريقي لکريات الدم البيضاء , وذلک  لقياس المناعة غير النوعية عند طيور التجربة . أخذت عينات الدم بطريقةٍ عشوائيةٍ بسيطةٍ (Simple Random Sampling) حسب الباحث کاميرون (Cameron, 1999) کما أخذت عينات دم أخرى لم يضاف لها مانع تخثر, تم تثفيلها وفصل المصل منها ومن ثم تم حفظها بمجمدات في درجة (-30) درجة مئوية ليتم معايرة الأضداد النوعية لمرض الجراب المعدي (مرض الجمبورو) في هذه الأمصال التي تم جمعها من کل مجاميع الدراسة  وذلک باستخدام اختبار المقايسة المناعية الأنظيمة (Enzyme-Linked Immunosorbent Assay ) (ELISA) .

- الاختبارات المصلية Serological Tests  :

أجريت الدراسة المصلية باستخدام اختبار المناعة المرتبطة بالأنظيم

 Enzyme-Linked Immunosorbent Assay ( ELISA )    

لمعرفة مستوى الأضداد النوعية لمرض الجراب المعدي  في مصل الدم ، و ُيعد هذا الاختبار هو المفضل في عمليات التقصي المصلي لأعداد کبيرة من العينات بالنسبة لمرض الجراب المعدي (IBD) ( Lee&Lin,1992) . و استخدمت طريقة الباحثون (Pick et al., 1981)  .لإجراء الاختبار و خطوات العمل حسب توصيات الشرکة المنتجة للمجموعة التشخيصية .

الشرائح الدموية

کما تم صنع شرائح دموية تحوي على أفلامٍ دمويةٍ رقيقةٍ من عينات الدم التي أضيف إليها مانع التخثر EDTA , ثم تم تثبيتها بالکحول المتيلي, ثم صبغها بصبغة غرام , ومن ثم تمت القراءة المجهرية لها , لدراسة  وحساب النسبة المئوية لأنواع الکريات البيضاء المختلفة کمؤشر يعطي صورة واضحة عن المناعة غير النوعية وخاصة منها الخلايا اللمفاوية .

- طريقة التحليل الإحصائي :    Statistic Analysis Method

درست الفرو قات في معايير الأضداد بين مجاميع الدراسة المختلفة باستخدام طريقة التحليل الوحيدة للفرق One Way Analysis of Variance .

کما تم دراسة الفروق في النسب المئوية للخلايا اللمفاوية وکذلک خلايا المستغيرات وبقية أنواع الکريات البيضاء  بين مجاميع الدراسة المختلفة باستخدام طريقة التحليل الوحيدة للفرق One Way Analysis of Variance .

استخدم برنامج التحليل على الحاسوب  (( Statistix , 1998 ، لإجراء جميع التحاليل الإحصائية في هذه الدراسة .

النتائج Results :

1-  تأثير خميرة البيرة (الجعة ) على المناعة النوعية :

Impact of Brewer`s yeast on Specific Immunity 

مقارنة معايير الأضداد باستخدام طريقة التحليل الوحيدة للفرق One-Way-Analysis of Variance:

تم استخدام طريقة تحليل الفرق الوحيد لمقارنة معايير الأضداد بين مجموعات الشاهد ومجاميع الدراسة التي أضيف لها خميرة البيرة أو الجعة , حيث تبين أن هناک فروقاً معنويةً بين کل مجموعة من مجاميع الدراسة التي أضيف لها خميرة البيرة ومجاميع الشاهد بالنسبة لمعايير الأضداد بالنسبة التهاب الجراب المعدي حيث کانت قيمة  p=   (0. 0008 )  (P<0.05) .

يوضح الجدول رقم (1) مقارنة معايير الأضداد لمرض التهاب الجراب المعدي باستخدام طريقة تحليل الفرق الوحيد بين مجاميع الدراسة المختلفة خلال فترة التربية التجريبية

 

 

(P=0. 0008< 0.05)

 

المخطط البياني (1) مقارنة معايير الأضداد لمرض التهاب الجراب المعدي باستخدام طريقة تحليل الفرق الوحيد بين مجاميع الدراسة المختلفة خلال فترة التربية التجريبية

 

 

2-  تأثير خميرة البيرة (الجعة ) على المناعة غير النوعية :

Impact of Brewer`s yeast on non- Specific Immunity 

مقارنة النسب المئوية للخلايا اللمفاوية والمستغيرات  باستخدام طريقة التحليل الوحيدة للفرق One-Way-Analysis of Variance:

تم استخدام طريقة التحليل الوحيدة للفرق بين مجاميع الشاهد التي لم يضاف لغذائها خميرة البيرة (الجعة) , وبين مجاميع التجربة التي أضيف لغذائها خميرة البيرة , حيث تبين أن هناک زيادةً معنويةً في نسبة اللمفاويات عند مجاميع التجربة التي أضيف لها خميرة البيرة مع غذائها عنها في مجاميع الشاهد التي لم يضاف لها مع غذائها خميرة البيرة (الجعة) , حيث  (P<0.05 ) وانخفضت بالمقابل نسبة خلايا المستغيرات انخفاضاً معنوياً عند مجاميع الدراسة التي أضيف لها خميرة البيرة مع غذائها عن تلک في الشاهد التي لم يضاف لها مع غذائها الخميرة  حيث (P<0.05).

الجدول رقم (2) مقارنة النسب المئوية للخلايا اللمفاوية  بين مجاميع الدراسة المختلفة خلال فترة التربية التجريبية

 

 

 

 

 

المخطط البياني رقم (2) مقارنة النسب المئوية للخلايا اللمفاوية  بين مجاميع الدراسة المختلفة خلال فترة التربية التجريبية

 

حيث کانت (P<0.05)

 

 

 

 

 

 

 

الجدول رقم (3) مقارنة النسب المئوية لخلايا المستغيرات بين مجاميع الدراسة المختلفة خلال فترة التربية التجريبية

 

 

 

 

 

 

 

المخطط البياني رقم (3) مقارنة النسب المئوية لخلايا المستغيرات بين مجاميع الدراسة المختلفة خلال فترة التربية التجريبية

حيث کانت   (P<0.05)

المناقشة : Discussion

قدمت هذه الدراسة , والتي استخدمت أحد  المحسنات المناعية ممثلة بخميرة البيرة أو الجعة Brewer`s yeast  , أو ما يدعى بالاسم العلمي سکروميزس سيرفيسيا Saccharomyces Cerevisiae  , ذات المنشأ الطبيعي ، والتي تحوي على النيوکلوتيدات النووية  بالإضافة إلى فيتامين B وعنصر السيلينيوم وغيرها من العناصر الهامة التي  تشابه ترکيب الخلية الحية .بل هي أصل الخلية الحية ، والتي ُتعرف بالنيوکلوتيدات النووية ،وبهذا تقدم  للخلية الطاقة اللازمة لعملية الانقسام الخلوي مباشرة بالإضافة إلى المواد الهامة في بناء الخلية ، وهذا يؤدي إلى قصر في فترة إنجاز عملية الانقسام الخلوي .

أثبتت الدراسة وجود فروق معنوية واضحة بين متوسط معايير الأضداد لمرض الجراب المعدي (الجمبورو ) بين مجموعات الشاهد ومجاميع الدراسة , حيث کانت قيمة = p  (0.00080 ) حيث  (P<0.05) . بينما لم يکن هناک دلالات معنوية بين مجاميع التجربة فيما بينها حيث کانت قيمة =P  (0.09 ) حيث (P>0.05) .

وقد توافقت نتائج هذه الدراسة مع العديد من الأبحاث کالباحثون (Vetvicka, et al.,1996 ) , في تجربة أجريت على دجاج اللحم حيث تم إضافة مخمرات الحبوب Brewer`s grains , والتي تحتوي على الخميرة الغنية ب بيتا غلوغانس (beta-glucans) , والتي تعتبر کمعدلات طبيعية للاستجابة المناعية حيث عملت خميرة البيرة على تحفيز الأجسام المضادة المناعية بعد التحصين ضد فيروس النيوکاسل ,  وعند قياس معيار الأجسام المضادة المناعية ضد مرض النيوکاسل في طيور دجاج اللحم المحصن الذي غذي على علف يحوي الخميرة کانت أعلى بفروق معنوية واضحة مقارنة مع  مجموعة الشاهد التي لم يضاف لعلفها خميرة البيرة أو الجعة .

و توافقت هذه الدراسة مع الباحثون (Onifade and Babatunde,1998) حيث أن إضافة خميرة البيرة يؤدي لزيادة الوزن وزيادة مقاومة الطائر لمقاومة الأمراض المعدية , وذلک عند معايرة الأجسام المضادة المناعية لمرض النيوکاسل .

وتوافقت أيضا مع الباحث (Navarro,et al.,1996) حيث أکد أن إضافة النيوکلوتيدات النووية المناعية لها تأثير محفز للجهاز المناعي , ويؤدي لإنتاج أجسام مضادة مناعية کما أنه يحسن إنتاج الأضداد 0(Ig) بشکل عام .

أثبتت الدراسة وجود زيادةً  معنويةً واضحةً في نسبة الخلايا اللمفاوية لمجاميع التجربة التي أضيف لغذائها خميرة البيرة عن مجاميع الشاهد التي لم يضاف لها أية خميرة , في جميع عينات الدم التي أخذت من طيور الدراسة کلها .

فکانت قيمة (p=0.0001 ) حيث نجد (P<0.05)  

هذه الزيادة المعنوية بکل الأعمار هي انعکاسسٌ واضحٌ لزيادة المناعة العامة في جسم طيور التجربة عنها في طيور الشاهد , حيث أن اللمفاويات هي المسؤولة عن إنتاج الأضداد , وهذا مؤشرٌ واضح ٌعلى تحفيز وتنشيط الجهاز المناعي. 

أما بالنسبة لخلايا المستغيرات فقد انخفضت في مجاميع التجربة التي أضيف لها في غذائها خميرة البيرة أو (الجعة), مقارنةً مع مجاميع الشاهد التي لم يضاف لها خميرة مع غذائها , وکان الانخفاض ذو قيمة معنوية في جميع عينات الدم التي أخذت في من طيور الدراسة کلها .

وکانت قيمة p=0.0123) ) حيث نجد (P<0.05)

وهذا الانخفاض يدل على تراجع العمليات الالتهابية في جسم الطيور, وذلک للفعالية العالية للنيکلوتيدات النووية الموجودة في الخميرة لرفع المناعة ومقاومة الأمراض .

وقد توافقت نتائج هذه الدراسة مع العديد من الأبحاث کالباحثون                             (Aggett et al., 2002; and Adjei, 1993)، إن إضافة  مرکبات تحتوي على النيوکليوتيدات النووية کمتممات علفية يمکن أن يحرض و يحسن المناعة الخلوية الوسيطة  Cell –mediated immunity (Van Buren et al., 1983) ، وإنتاج اللمفاويات  Lymphocyte proliferation (Yamauchi et al., 1996) , و تحسين مقاومة العائل عموماً و مقاومة الأخماج الجرثومية خاصةً . و في السنوات القليلة الماضية تم استخدام النيوکلوتيدات النووية عن طريق إضافتها مع غذاء الطيور کمتمم علفي لتحسين الوظائف المناعية ، و تحسين فعالية اللقاح ،  و مقاومة الأمراض. وکذلک الباحثون .(Park et al .,1991; Dejonge et al ., 2002) , إن استعمال بعض  المعدلات المناعية المناسبة Immunomodulator  يمکن أن تحد من تأثيرات التثبيط المناعي للقاحات الحية , کما ينشط و يحرض الأنماط الخلوية المختلفة الموجودة في الجهاز المناعي مثل الخلايا القاتلة الطبيعي Natural Killer cells (NK) , والبلاعم والخلايا اللمفاوية ذات النمط B-T .

الاستنتاج : Conclusion

مما تبين نجد أن استخدام خميرة البيرة أو الجعة يعتبر محفز للمناعة للوقاية من الأمراض, وقد أعطت خميرة البيرة عند إضافتها للعلف المقدم لدجاج اللحم بمقدار 1000غ /طن معدلات عالية بالنسبة لمعايير الأضداد النوعية لمرض الجراب المعد ي الجمبورو, عند استخدامها مع التحصين بالأنواع الثلاث من اللقاحات المستخدمة في سوريا , مقارنةً مع مجاميع الشاهد التي لم يضاف لها في علفها الخميرة  .کما أعطت نسبةً عاليةً من  الخلايا اللمفاوية , لمجاميع التجربة التي أضيف لغذائها خميرة البيرة, عن تلک في مجاميع الشاهد التي لم يضاف لها أية خميرة , هذه الزيادة المعنوية بکل الأعمار هي انعکاسٌ واضحٌ لزيادة المناعة العامة في جسم طيور التجربة عنها في طيور الشاهد . حيث أن اللمفاويات هي المسؤولة عن إنتاج الأضداد وهذا مؤشرٌ واضح ٌعلى تحفيز وتنشيط الجهاز المناعي .

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

References:

1)     Abbas, A. K., and A. H. Lichtman. Basic Immunology: Functions and Disorders of the Immune System . Philadelphia: W. B. Saunders Co., 2001. pp 28−61

2)     AGGETT, R., LEACH J. L., RUEDA, R., MACLEAN, W. C. (2002)-Innovation in Infant Formula Development: A Reassessment of Rib nucleotides. Nutrition Journal, Vol. 19, No. 375-84.

3)     ADJEI, A. A., TAKAMINE, F. YOKOYAMA, H. SHIOKAWA, K., MATSUMOTO, Y., ASTO, L. (1993)- The effects of oral RNA and Intraperitoneal Nucleoside- Nucleotide Administration on Methillin- Resistant Staphylococcus Aurous Infection in Mice. Journal of Parenter Enteral Nutrition. Vol. 17, No. 148-52.

4)     Bhattacharjee, J.K.1970- Microorganisms as Potential Sources of Food, Advan. Appl. Microbiol., 13, 139-161

5)     CARTER,H. E., AND G. E. PHILLIPS 1944 Nutritive value of yeast protein.Federation Proe., 3: 123-128.

6)     Cameron A (1999) Survey Toolbox A Practical Manual and Software Package for Active Surveillance of Livestock Diseases in Developing Countries. Australian Centre for International Agricultural Research Monograph No. 54. pp 37 - 47

7)     De Jonge WJ,Kwikkers WL.teVelde AA,van Deventer SJ,Notlte MA,Mebius RE,et al .2002-Arginine deficiency affects early B cell maturation and lymphoid orgqn development in  transgenic mice. J Clin Invest,110.(10):1539-48.

8)      Lukert , P.D ., Saif , Y .M . 1997- infectious bursal disease in:B.W.Calnek , H .J. Barnes ,C.W.Beard , L.R. McDouglad , Y.M. Saif (Eds) ., diseases of Poultry , 10 th ed , lowa state University press ,Ames , IA , PP.721-738 .

9)     Lee,L.H.andLin,Y.P. 1992-Amonoclonal antibody capture enzyme – linked Immunosorbent assay for Detecting antibodies to infectious bursal disease virus.Journal of virological methods,36:13-23.

10)Muller,  H., Islam , R.,and Raue,R. ,2002-.Research on Infectious Bursal Diseas the past,the present and the future.Veterinary Microbiology Journal,97:153-165

11)Navarro, J., A. Ruiz-Bravo, M. Jimenez-Varela, and. A. Gil. 1996. Modulation of antibody-forming cell and mitogen-drive lymphoproliferative responses by die- tarynucleotides in mice. Immunology Letters 53:141-145.

12)Onifade, A.A. and G.M. Babatunde, 1998- Comparisonthe utilization of palm kernel meal, brewers’ driedgrains and maize offal by broiler chicks. Br. Poult.Sci., 39: 245-250.

13)  Park KG,Hayes PD,Garlick PJ,Sewell H,Eremin O.1991-Stimulation of lymphocyte natural cytotoxicity by L-arginine.Lancet.16.337(8742):645-

14)  PICK, E., MIZEL, D. 1981- Rapid Microassays for the Measurement of Superoxide and Hydrogen Peroxidase Production by Macrophages in Culture Using an Automatic Immunoassay Reader. Journal of Immunol Methods, Vol: 46:211-26.

15) Stone, C. 1998- Yeast products in the feed industry. Ed. By Mills, d. Inc. Cedar Rapids, Iowa., p. 10-11.

16) STATISTIX, 1998- Analytical Softewar, Guideline manual , Version, 2.0. USA.

17) Van Buren, C. T., KLKARNI, A. D., SCHANDLE, V. B., RUDOLPH, F. B. (1983)-The Influence of Dietary Nucleotides on Cell-Mediated Immunity. Transplantation Journal, Vol. 36, No. 350-2.

18)  Vetvicka, V., B.P. Thornton and G.D. Ross, 1996- Soluble beta-glucan polysaccharide binding to the lectin of neutrophil or natural killer cell complement receptor type 3 (CD11b/CD18) generates a primed state of the receptor capable of mediating cytotoxicity of iC3b-opsonized target cells. J Clin Invest. 1996;98(1):50–61. doi:10.1172/JCI118777

19)WHITEHEAD, J. A 2003- Effect of Ascogen on intestinal Morphology and the Performance of the Broiler Chicken. University of Nottingham, UK.

20) YAMAUCHI, K., ADJEI, A. A., AMEHO, C. K., CHAN, Y. C., KULKARNI, A. D. SATA. (1996)- A nucleoside-Nucleotide Mixture and Its Components Increase Lymph proliferative and Delayed Hypersensitivity Responses in Mice. Journal of Natural, Vol. 126, No. 1571-7.

 

 

 

 

Article View: 136